TRABAJOS ORIGINALES
Dr. Juan-Manuel Anaya: Unidad de Reumatología, Corporación para Investigaciones Biológicas (CIB), Medellín; Fabio Jiménez: Estudiante de Microbiología, Convenio Unidad de Reumatología, CIB y Universidad de los Andes, Santafé de Bogotá; Dra. Susana Restrepo: Unidad de Reumatología, CIB; Dra. Cecilia A. Henao: Facultad de Odontología, Universidad de Antioquia, Medellín; Dr. Jorge Rueda: Sección de Reumatología, Centro Médico Fundación Valle del Lili, Cali; Dr. Rubén D. Mantilla: Unidad de Reumatología. CIB, y Clínica de Artritis y Rehabilitación, Santafé de Bogotá.
Objetivo. Evaluar el papel del óxido nítrico (NO) en el síndrome de Sjögren primario (SSp) y su relación con la apoptosis tisular en glándulas salivares menores (GSM).
Métodos. Las GSM correspondieron a sialoadenitis focal propia del SSp, sialoadenitis crónica (SAC) y a GSM histológicamente normales. El progreso del SSp fue evaluado mediante el puntaje por focos inflamatorios en GSM. Los niveles salivares y séricos de nitrito (N02-) fueron medidos mediante la reacción de Griess. La expresión de la óxido nítrico sintasa tipo 2 (NOS2) y de la cistatina C (Cis-C), un inhibidor fisiológico de proteasas, fue examinada en GSM por inmunohistoquímica, y analizada de manera semi-cuantitativa. La apoptosis tisular fue evaluada determinando la fragmentación del ADN mediante la incorporación de nucleótidos marcados.
Resultados. Los niveles de N02 - en saliva fueron mayores en pacientes con SSp (n=17) que en controles sanos (n=17) (71.7 ±20.6 vs 19.5 ±3.7 uM, p=0.02), mientras que en suero fueron similares (22.3 ± 3.8 vs 17 ± 1.4 uM). En el infiltrado inflamatorio la expresión de NOS2 fue mayor en pacientes con SSp que con SAC (n=4) (94% vs 7%). La NOS2 fue observada también en células epiteliales canaliculares, células acinares y fibroblastos de pacientes (SSp y SAC), y de controles normales (n=5). En GSM de pacientes con SSp la expresión de NOS2 fue mayor en aquellas con focos inflamatorios <4 (78% vs 17%, p=0.04) y con menor número de células apoptóticas en el infiltrado inflamatorio (0.6 ±0.2 vs 1.66 ± 0.3, p=0.02). La expresión de Cis-C fue observada en los tres grupos estudiados, principalmente en células epiteliales canaliculares, en algunos plasmocitos y células acinares de pacientes con SSp. No se observó asociación entre la expresión de Cis-C y la apoptosis tisular.
Conclusión. Este estudio confirma el aumento de la síntesis de NO en el SS primario, producido localmente en el sitio inflamatorio, principalmente durante las fases tempranas de la enfermedad, y sugiere su participación en el bloqueo de la apoptosis linfocitaria, la cual no es regulada por la Cis-C. El mecanismo de esta inhibición apoptótica podría estar asociado a la S-nitrosilación de caspasas. (Acta Med Colomb 1999;24:89-95).
Palabras clave: Oxido nítrico, síndrome de Sjögren, apoptosis linfocitaria.
El síndrome de Sjögren (SS) es una enfermedad autoinmune caracterizada por un infiltrado inflamatorio linfoplasmocítico benigno en las glándulas exocrinas, que conlleva a la disminución de secreciones glandulares y sequedad de mucosas, ocasionando síntomas secos, principalmente en ojos (xeroftalmía) y en boca (xerostomia). El SS puede observarse asociado a otras enfermedades autoinmunes, en particular a la artritis reumatoidea (SS secundario), o presentarse aisladamente como entidad única (SS primario) (1). .
Para diagnosticar el SS hay varias pruebas disponibles. Ellas incluyen un examen cuidadoso de los ojos, la medida de la producción lagrimal y de saliva, la biopsia de las glándulas salivares menores (GSM) y la determinación de autoanticuerpos séricos.
En la biopsia de GSM de pacientes con SS primario se observa la presencia de una sialoadenitis focal (SAF), consistente en un agregado de 50 o más células mononucleares (un foco inflamatorio), principalmente linfocitos Τ CD4 y Β (en proporción 4:1), en áreas periductuales o perivasculares, adyacentes a acinos glandulares de apariencia normal, con ausencia de fibrosis (2, 3). La sialoadenitis se evalúa de acuerdo con el puntaje por focos. Este es el número de focos inflamatorios /4mm2 de tejido. El puntaje por focos se califica en una escala de 1 a 12, donde 10 es el valor máximo que se puede asignar antes de que el infiltrado sea confluente; cuando esto ocurre se da un valor de 12. Un puntaje por focos > 1 tiene una especificidad del 95% y una sensibilidad del 63% para el diagnóstico del SS (4). Por estudios longitudinales se sabe que el infiltrado inflamatorio progresa durante el transcurso de la enfermedad (5). Desde el punto de vista histopatológico, el principal diagnóstico diferencial de la SAF es la sialoadenitis crónica (SAC), la cual es definida como la presencia de un infiltrado inflamatorio disperso, en número menor a 50 células/4 mm2 de tejido (1-3).
Si bien los mecanismos que conducen a la destrucción glandular y disminución de la producción salivar no son completamente conocidos, la participación de citoquinas, principalmente con perfil TH1, y autoanticuerpos, son importantes en la fisiopatología del SS primario (1, 6). Los linfocitos que infiltran las glándulas salivares de pacientes con SS tienen un bloqueo en la apoptosis, con aumento de los niveles de Bcl-2 (un protooncogen que inhibe la apoptosis), a pesar de expresar Fas (una proteína de membrana que induce apoptosis) (7).
La apoptosis, o muerte celular programada, es un evento homeostático involucrado en el desarrollo y renovación celular, así como en la defensa inmunológica, tanto contra agentes externos como internos. En la apoptosis, la célula se separa de las aledañas, comienza a perder su morfología típica, el citoplasma comienza a condensarse al igual que la cromatina, los distintos organelos se compactan, el ADN se fragmenta y, finalmente, la célula se desvanece mediante la generación de cuerpos apoptóticos, los cuales son fagocitados sin generar una respuesta inflamatoria (8-10).
El óxido nítrico (NO) es un radical libre gaseoso sintetizado a partir de la L-arginina por la familia de las óxido nítrico sintasas (NOS) (11). Es un poderoso e importante mediador fisiológico que participa en la relajación endotelial, la neurotransmisión, la inhibición de la agregación plaquetaria, la modulación del sistema inmune, la toxicidad microbicida y cancerígena, y la regulación de las funciones fisiológicas de la membrana muscular (12-14).
Estudios realizados en pacientes con enfermedades inflamatorias autoinmunes, o en modelos experimentales de éstas, han mostrado que el NO puede ser un mediador patológico (15-18). En 12 pacientes con SS primario, Konttinen y cols (17) observaron niveles superiores de nitritos (NO2-), un producto estable de la oxidación del NO, en saliva comparado con controles. En las glándulas salivares reportaron la presencia de NOS inducible (NOS2) en células mononucleares y acinales, así como la localización simultánea de NOS2 y del factor de necrosis tumoral-α en células epiteliales de los canalículos. Estos resultados sugieren que el NO puede contribuir con el daño tisular y la atrofia acinar en el SS primario (17).
El NO también participa en la apoptosis, en donde se ha observado tiene un papel tanto inductor como protector. Este efecto, aparentemente contradictorio, depende de las condiciones de cada experimento, en particular del tipo de célula evaluada y de las concentraciones de NO (19-24). En el presente estudio evaluamos la relación entre el NO y la apoptosis tisular en pacientes con SS primario. Nuestros resultados sugieren que el NO podría participar en el bloqueo de la apoptosis linfocitaria característica de esta enfermedad.
Pacientes
Los pacientes fueron seleccionados de la Unidad de Reumatología de la Corporación para Investigaciones Biológicas (CIB) en Medellín y de la Sección de Reumatología del Centro Médico Fundación Valle del Lili, en Cali. Todos los pacientes cumplieron al menos cuatro de los seis criterios de clasificación diagnóstica para el SS primario, incluyendo una biopsia positiva de GSM (puntaje por focos >1) (25).
Controles
Correspondieron a individuos sanos, sin evidencia de enfermedad crónica, apareados a los pacientes por edad y sexo. Fueron incluidos para el estudio de saliva y suero.
Muestras de saliva y suero
Las muestras fueron recolectadas en la mañana. La saliva total, de los pacientes y de los controles, fue recolectada bajo estímulo con parafina durante 15 minutos en tubos estériles Falcon de 15 ml. Cuando la muestra de saliva fue insuficiente por importante hiposialia (< 2 ml), se diluyó 1:10 en solución salina al 0.85%. Las muestras de saliva total fueron centrifugadas a 5000 r.p.m. a 4°C durante 20 minutos. El sobrenadante fue guardado a -70°C hasta su análisis.
Determinación de nitritos en suero y saliva
Los nitritos (NO2-) fueron determinados utilizando el reactivo de Griess compuesto por sulfanilamida al 1% (w/ v) en 5% de H3PO4 (v/v) y 0.1% de N-(l-naphthyl) etilenediamina HCl (w/v), en microplatos de 96 pozos de fondo plano. En resumen, a 50 ul de la muestra se agregaron 50 ul de cada una de las soluciones del reactivo de Griess, con incubaciones de ocho minutos para cada una, protegidas de la luz. La absorbancia de la reacción de color fue leída a 540 nm por espectrofotometría (Labsystems Multiskcan MCCV340, Helsinki, Finlandia). Para la lectura de NO2- en suero se preparó una curva estándar de nitrito de sodio (NaNO2) en suero bovino fetal al 10%, con un rango de concentración de 0 a 100 uM para cada ensayo. La concentración de NO2- en todas las muestras fue determinada por triplicado. La lectura de NO2 en saliva se realizó de la misma manera que en el suero pero, a diferencia de éste, la curva estándar de NaNO2, se preparó en agua con un rango de concentración de 0 a 250 uM. El cálculo de la concentración de NO2 fue realizado mediante el promedio de las absorbancias a través de la ecuación de la recta, generada a partir de un análisis de regresión lineal para cada ensayo.
Muestras
Las biopsias de GSM fueron obtenidas de pacientes con SS primario (n=17), sialoadenitis crónica (n=4) e individuos con xerostomia en los que se practicó una biopsia de GSM y cuyo análisis no mostró alteraciones histológicas (n=5).
El análisis histológico de las biopsias de glándula salivar se realizó en cortes de 1-4 mieras luego de haber fijado el tejido en formol neutro al 10%, procesado en parafina y coloreado con hematoxilina-eosina. El resultado fue considerado en favor del compromiso oral del SS cuando se observó una sialoadenitis focal con importante infiltrado linfoplasmocitario. Este infiltrado fue clasificado de acuerdo con el puntaje por focos (4). La confirmación del puntaje por focos fue realizada mediante análisis semiautomático. utilizando la siguiente fórmula:
Puntaje por focos = Número de focos inflamatorios x 4
Area de glándulas salivares (mm2)
Anticuerpos
Anticuerpo policlonal de conejo anti-NOS2 (Affinity BioReagents, Golden, CO, E.U.), anticuerpo policlonal de conejo anticistatina-C humana (cortesía del Dr. Orlando Chaparro y Dra. Phyllis A. Shaw, Departamento de Biología Celular y Anatomía, Hospital Mount Sinai, Nueva York, E.U.), anticuerpo secundario de cabra biotinilado anti IgG de conejo (Chemicon, CA, E.U.), estreptavidina conjugada con fosfatasa alcalina (Kirkegard & Perry Laboratories, Gaitherburg, MA, E.U.), kit sustrato Vector red (Vector Laboratories, Burlingame, CA, E.U.).
Los cortes de las biopsias parafinadas fueron colocadas individualmente en láminas superfrost/plus (Fisher scientific, Pittsburgh, PA, E.U.) para disminuir el riesgo de desprendimiento, y desparafinadas mediante calentamiento a 57 °C durante 12 horas, para luego ser rehidratadas con etanol a concentraciones descendentes (100%, 90%, 70%) y agua, previo lavado con xilol. Luego, las láminas fueron permeabilizadas en Triton X-100 al 0,05% (Sigma Chemical Co, St Louis, MO, E.U.). Los sitios de unión inespecíficos fueron bloqueados con albúmina sérica bovina (Sigma) al 5% durante 30 minutos a temperatura ambiente. A continuación, las secciones fueron incubadas con anti-NOS2 (1:300) durante una hora a temperatura ambiente. Previo lavado con PBS, se adicionó el anticuerpo secundario biotinilado (1:200) y se incubó durante una hora a temperatura ambiente. Posteriormente, y previo lavado con PBS, se adicionó la estreptavidina conjugada con fosfatasa alcalina y se incubó durante 30 minutos a temperatura ambiente. Previo a un último lavado con buffer Tris HCL durante cinco minutos, se reveló con la solución sustrato Vector red y levamisol al 0.01 M (como inhibidor de la fosfatasa alcalina endógena). Finalmente, las láminas fueron contrateñidas con hematoxilina-eosina (Sigma), deshidratadas en etanol a concentraciones ascendentes (70%, 90%, 100%), aclaradas con xilol absoluto y montadas con cytoseal (Stephens Scientific, Riverdale NJ, EU). Para cada muestra se preparó un control negativo en el que el anticuerpo primario anti-iNOS fue sustituido por PBS. El mismo procedimiento anterior se siguió para la cistatina-C, 1:300 para el anticuerpo primario, y 1:300 para el anticuerpo secundario biotinilado. El control negativo se generó reemplazando el anticuerpo primario anti-cistatina-C por PBS.
La lectura de las láminas se realizó en doble ciego por dos investigadores. Cuando existió disparidad entre ellos, una tercera lectura fue realizada. La expresión de NOS2 y cistatina-C fue cuantificada en porcentaje para cada tipo celular (célula epitelial, infiltrado inflamatorio, acinos). El porcentaje se determinó estableciendo cualitativamente la cantidad aproximada de células de la lámina que fueron positivas para NOS2 y cistatina-C. De este modo se estableció la siguiente asignación: + (<30%), ++ (entre el 30 y el 70%), +++ (>70%).
Determinación de la apoptosis tisular
La apoptosis en glándulas salivares fue determinada mediante mareaje de la fragmentación del ADN utilizando el kit "Fragment End Labeling" (FragEL) (Amersham, Londres. Inglaterra). En resumen, los cortes de tejido fueron desparafinados en xilol, rehidratados en alcoholes graduados y permeabilizados con proteinasa Κ [20 ug/ml en Tris 10mM (pH 8,0)] durante 15 minutos. Posteriormente, las peroxidasas endógenas se inactivaron con Η2Ο2 al 3% en metanol durante cinco minutos. A continuación, las secciones fueron incubadas a una temperatura de 37°C durante 1,5 horas con la mezcla de reacción de mareaje, la cual contiene la enzima terminal dideoxinucleotidyl transferasa (TdT) y deoxinucleótidos marcados (dCTP) con biotina y sin marcar. Seguidamente se adicionó estreptavidina conjugada con peroxidasa de rábano por un tiempo de 30 minutos a temperatura ambiente. Inmediatamente, el ensayo fue revelado con diaminobenzidina, por un tiempo de 15 minutos, al término del cual la reacción fue detenida con H2Od. Finalmente las muestras fueron contrateñidas con verde de metilo, deshidratadas en lavados con alcohol absoluto, clarificadas con xilol, y montadas con cytoseal (Stephens Scientific, Los Angeles, CA, E.U.). Los controles negativos fueron obtenidos reemplazando la enzima TdT en la mezcla de reacción de mareaje por H2Od. A parte de las láminas control suministradas por el proveedor, se usaron tejidos de cáncer neuroectodérmico.
El índice de apoptosis fue definido mediante la relación entre el número de acinos presentes en la lámina y el número de células apoptóticas presentes en el infiltrado inflamatorio. .
Análisis estadístico
Las diferencias entre porcentajes se evaluaron mediante la prueba exacta de Fisher a dos colas. Las diferencias entre promedios se calcularon mediante la prueba de MannWhitney. El valor de ρ < 0.05 fue considerado significativo.
Diecisiete mujeres con SS primario fueron incluidas en este estudio. La edad promedio fue 49.6 ± 1.5 años, con una duración de la enfermedad de 5.7 ± 0.6 años. Todas las pacientes presentaron xerostomia.
Niveles de nitritos
Los niveles de NO2 - fueron significativamente mayores en saliva de pacientes con SSp que en controles sanos, mientras que en suero éstos fueron similares (Tabla 1).
Expresión de NOS2 en glándula salivar
Se observó la presencia de NOS2, en conductos salivares, acinos serosos e infiltrado inflamatorio. En los conductos salivares la expresión de la NOS2, estuvo presente tanto en conductos intercalares como en conductos estriados. La expresión de NOS2 en conductos se observó en pacientes con SS, SAC, y controles (Figura 1).
La presencia de NOS2 se observó también en acinos, específicamente en las estructuras conocidas como semilunas de Von-Ebner presentes exclusivamente en sitios donde los acinos son mixtos, es decir donde se presentan conjuntamente acinos mucosos y serosos (Figura 2). La presencia de acinos serosos positivos para NOS2 fue < 30% en las GSM de los tres grupos examinados.
En el infiltrado inflamatorio la expresión de NOS2 fue mayor en pacientes con SS primario que con SAC (94% vs 7%); este infiltrado correspondía principalmente a linfocitos (Figura 2). Se observó NOS2 en algunos fibroblastos en los tres grupos estudiados y, ocasionalmente, en células mioepiteliales.
En GSM de pacientes con SS primario, la expresión de NOS2, tanto en conductos e infiltrado inflamatorio, fue mayor en las GSM con focos inflamatorios <4 (Tabla 2).
Apoptosis tisular
Se observó apoptosis de células epiteliales canaliculares en los tres grupos evaluados, sin diferencias significativas entre ellos. En el infiltrado inflamatorio de pacientes con SS primario, las GSM con menor número de células mononucleares apoptóticas/acino glandular, correspondieron a aquellas con mayor expresión de NOS2 (Tabla 3 y Figura 3). No observamos asociación entre apoptosis linfocitaria y el puntaje por focos.
Figura 1. Inmunohistoquímica para NOS2 en glándulas salivares menores (GSM). A. Control negativo. Infiltrado linfocitaria alrededor de acino glandular en GSM de paciente con SS primario (x10). B. Expresión de NOS2 en GSM de paciente con SS primario en canalículos (flechas delgadas, a la izquierda), y en plasmocitos del infiltrado inflamatorio (flecha ancha, en el centro) (x10). C. Expresión de NOS2 en canalículo secretor de GSM de sialoadenitis crónica (x40). D. Expresión de NOS2 en conducto estriado de GSM en SS primario, con cambios de exocitosis (permeabilización de linfocitos en área de células epiteliales -flechas-). A la izquierda se observan algunos acinos glandulares mucosos de apariencia normal (x40).
Cistatina C
La expresión de cistatina-C, un inhibidor de las proteasas tipo cisternas, fue observada en los tres grupos estudiados, principalmente en células epiteliales canaliculares, en algunos plasmocitos y células acinares de pacientes con SS primario. No se observó asociación entre la expresión de cistatina-C y la apoptosis tisular.
El presente estudio confirma el aumento de la síntesis de NO en el SS primario, en donde es producido localmente, en el sitio inflamatorio, por células epiteliales canaliculares, acinares y linfocitos. Además, nuestros resultados sugieren la participación del NO en el bloqueo de la apoptosis linfocitaria característica de la enfermedad.
En condiciones fisiológicas, el NO en las glándulas salivares puede contribuir a la regulación vascular, al flujo salivar, y a la liberación de neuropéptidos (17). En el SS primario, dados los efectos neurotóxicos que presenta, al NO puede ser responsable de la pérdida de la inervación glandular (17). Además, la participación del NO en el bloqueo de la apoptosis linfocitaria facilitaría la perpetuación de la citotoxicidad. Por lo tanto, el NO es uno de los factores responsables de la hiposialia observada en esta enfermedad. La participación de NO fue mucho más evidente en las fases tempranas de la enfermedad (puntaje por focos <4). No obstante, no existe una estrecha correlación entre el grado del infiltrado inflamatorio y la producción de saliva (1). Por lo tanto, otros factores (citoquinas, autoanticuerpos), producidos localmente en distintas etapas de la enfermedad, intervienen también en la hiposialia.
La NOS existe como tres isoformas que son la endotelial (eNOS o NOS 1), la neuronal (nNOS o NOS3), y la inducible (iNOS o NOS2) (11-14), aunque también se ha descrito la muscular (nNOSu), derivada de la NOS3 (13). La NOS1 y la NOS3 son expresadas constitutivamente y producen niveles bajos de NO (12-14). La NOS2, a diferencia de las constitutivas, es expresada bajo estímulos muy regulados en los que intervienen citoquinas, principalmente TH1, que permiten una catálisis sostenida y una mayor producción de NO (12-15).
El papel del NO en enfermedades inflamatorias está dado por su reactividad como radical libre, que lo hace inestable, favoreciendo su reacción con otros agentes químicos oxidantes, tales como el anión superóxido O2 -, que lo transforma en peroxinitrito. un poderoso agente oxidante (13). El NO tiene la capacidad de nitrosilar proteínas que contienen tioles, actuar sobre agrupamientos Fe-S, y hemoproteínas (13, 14, 16). Las consecuencias de estas acciones son el bloqueo enzimático y un estado de agotamiento energético celular.
La apoptosis se lleva a cabo fundamentalmente a través de la acción de proteasas específicas del tipo cisterna (10, 26), conocidas como caspasas, que actúan sobre un ácido aspártico (Asp), ubicado dentro un motivo consenso de cuatro aminoácidos (S4-S3-S2-S1, Sl=Asp) (10). El NO, tal como ha sido mencionado, puede reaccionar con proteínas que contienen grupos hemo, agrupamientos de Fe-S y tioles; además, puede interrumpir la fosforilación oxidativa y la glicólisis, provocando la inhibición de DNA sintetasas y enzimas mitocondriales (13, 14). En relación con los resultados de este estudio, previamente ha sido señalado que el NO puede inhibir la apoptosis linfocitaria mediante la prevención de la disminución de la expresión de Bcl-2 (23), y mediante la inhibición de la acción de Fas (21). El NO inhibe la caspasa 8 (iniciadora de apoptosis) y la caspasa 3 (efectora de la apoptosis), mediante la S-nitrosilación de los residuos de cisterna, indispensables para la actividad enzimática (21, 26, 27). Estudios futuros que evalúen la activación de caspasas en GSM y su relación con el NO en el SS primario son necesarios para confirmar nuestros resultados.
Finalmente, este estudio sugiere que la cistatina-C, un inhibidor de las proteasas tipo cisternas y producido fisiológicamente en glándulas salivares (28), no participa en la regulación de la apoptosis linfocitaria del SS primario. Similares resultados fueron observados en glándulas salivares de ratones diabéticos no-obesos, que representan un modelo murino del SS (29). No obstante, no se descarta que otras cistatinas sean indispensables en este proceso.
Objective. To examine the role of nitric oxide (NO) in primary Sjögren's syndrome (pSS), and its relation to tissue apoptosis in minor salivary glands (MSG)
Methods. MSG corresponded to focal sialoadenitis (characteristic of pSS), chronic sialoadenitis (CSA) and to histologically normal MSG. The progress of pSS was evaluated measuring the focus score in MSG (by Daniels' method). Nitrite (NO2-), a stable end-product of NO oxidation, was measured in serum and saliva using the Griess reagent. The expression of nitric oxide synthase type 2 (NOS2) and of cistatin C (Cis-C), a physiologic protease inhibitor, was examined on MSG by immunohistochemical techniques, and measured semiquantitatively. Cellular apoptosis was evaluated by determining the fragmentation of DNA through the incorporation of marked nucleotides (Tunel method).
Results. Levels of NO2- in saliva were greater in patients with pSS (n=17) than in healthy controls (n=17) (71.7 ± 20.6 vs 19.5 ± 3.7 uM, p=0.02) whereas in serum they were similar (22.3 ± 3.8 vs 17 ± 1.4 uM). NOS2 expression in inflammatory cells was higher in pSS MSG than in CSA MSGs (n=4) (94% vs. 7%). NOS2 was also present in ductal epithelial cells, acinar cells, and fibroblasts from patients (pSS and CSA) and in normal controls (n=5). NOS2 was found in significantly higher percentage in both ductal epithelial cells and inflammatory cells in SS patients with focus scores <4 (78% vs. 17%, p=0.04) and with a lower number of apoptotic cells in the inflammatory infiltrate (0.6 ± 0.2 vs. 1.66 ± 0.3, p=0.02). The expression of Cis-C was observed in the three groups studied, mainly in canalicular epithelial cells, some plasmocytes and acinar cells from patients with pSS. No association was observed between the expression of Cis-C and apoptosis.
Conclusion: This study shows the increase in the synthesis of NO in pSS, produced locally at the inflammatory site, predominantly in the early stages of the disease, and suggests its participation in the lymphocytic blocked apoptosis, which is not regulated by Cis-C. The mechanism of this apoptotic blockade could well be associated to the Snitrosilation of caspases.
Key words: Nitric oxide, Sjögren syndrom, lymphocitic apoptosis.
Este trabajo fue financiado por Colciencias (2213-04-350-96), la Fundación Síndrome de Sjögren de Colombia y la empresa privada.
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